重磅首发｜清北、中科院等二十余高等学府联合构画“衰老全景图”，全方位深度狙击衰老

联合国（UN）曾预测，到2050年，全球超过65岁的人口将占总人数的六分之一，老龄化已然成为无法避免的趋势。然而，随医疗技术的进步，我们的平均寿命虽然得到显著增加，但“健康寿命”并没有跟上延寿的步伐，衰老及其伴随的众多慢性疾病仍是目前难以解决的人体负担和医疗挑战。

如何减缓衰老进程、促进“健康老龄化”（将机体健康功能维持到老年）成为了亟待解决的社会难题。

近日，《中国科学：生命科学》英文版（SCIENCE CHINA Life Sciences）在线发表了由中国科学院动物研究所刘光慧和北京大学韩敬东统筹，中国科学院动物研究所宋默识、杭州师范大学刘俊平、武汉大学刘勇、四川大学肖智雄、南昌大学田小利、上海生物化学与细胞生物学研究所邹卫国、中国科学技术大学刘强、中国科学院昆明动物研究所孔庆鹏、同济大学毛志勇、中国科学院上海营养与健康研究所孙宇、上海交通大学医学院叶静、广州国际生物岛实验室胡苹、清华大学王戈林、中国科学院遗传与发育生物学研究所田烨、中国科学院上海营养与健康研究所肖意传、清华大学王建伟、中国科学院动物研究所曲静、北京大学谢正伟、中国科学院北京基因组研究所张维绮、中国科学院微生物研究所王军、中国科学院上海营养与健康研究所张亮、中国科学院北京基因组研究所任捷、中国科学技术大学宋晓元、首都医科大学宣武医院王思、北京干细胞与再生医学研究院马帅等53位科研人员联合撰写的衰老全景综述——“The landscape of aging”。

该综述参考了逾千篇衰老领域研究文献，以超5万字、20张插图和5张表格的篇幅，从衰老机制、器官衰老特征和衰老干预三个方面系统总结了衰老领域的经典理论和近年来衰老研究取得的重要进展，是目前国际上最为详尽的衰老研究综述之一。

图：衰老全景图。这张图从细胞(底部)、组织、器官和系统(中间)、机体(顶部)各个层面描绘了衰老的全景。以及辅助衰老研究的新技术(左侧)和干预和恢复策略(右侧)

综述发布后，时光派第一时间组织内部集体学习。为方便广大读者、同道一起学习进步，现将内部编译资料分享如下（共1.9万字，建议收藏）。

此外，为庆祝国内衰老自主研究成果涌现，编辑部奋战中秋，日夜兼程，对综述进行了全文翻译（图片、表格均已汉化，全文共13万字，260余页文档，远超微信推文字数限制），愿无偿分享，领取方式详见文末。

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一直以来，细胞衰老被认为是衰老的主要原因，也是联系衰老与诸多老龄化疾病之间的桥梁，然而细胞衰老和衰老的关系一直未得到明晰，因此，在本节中，派派将为大家一一揭示细胞衰老的分子机制。

No.1

干细胞衰老

什么是干细胞衰老

干细胞作为维持体内稳态和可塑性的万能细胞，可以在体内终生存在，然而随年龄的增长，干细胞容易受到核DNA和线粒体DNA损伤、表观遗传变化、细胞周期改变、氧化应激和线粒体功能障碍、蛋白质稳态破坏、信号通路改变、外部和系统性变化、自噬和代谢失调的多方影响，并积累损伤，最终导致衰老或功能衰退，因此干细胞衰老也被认为是机体衰老的重要表现之一[1,2]。

干细胞衰老机制

一方面，人体中每个干细胞在其整个生命周期中，都会经历数十万次来自内源性代谢副产物（如ROS和炎症）和外源性物质（如环境中的辐射和化学物质）的毒性损害，而这些物质会进一步破坏DNA结构和功能[3]。另一方面，随年龄的增长，干细胞中DNA修复能力（如核苷酸切除修复（NER）在内的修复途径）逐渐下降，基因组损伤积累会损害正常干细胞的功能，破坏组织稳态[4]。

并且，长寿相关的SIRT3和SIRT7蛋白也易随干细胞衰老而减少，导致核膜蛋白和异染色质相关蛋白的复合物的形成受损，而脂蛋白颗粒的载脂蛋白(APOE)又在衰老的干细胞中积累，并作为异染色质的去稳定剂而发挥作用，进一步驱动细胞衰老[5]。异染色质稳定性的变化，也会改变机体在表观遗传修饰方面的表达。

在细胞水平上，干细胞功能会因年龄增长而发生慢性炎症而受损，并表现出一系列衰老标志物，包括衰老相关的β-半乳糖苷酶(SA-β-gal)活性升高、Rb-p16和p53-p21通路上调、持续性DNA损伤以及生长因子、蛋白酶和细胞因子分泌[6]。

在代谢水平上，衰老会使干细胞的自噬功能受损，导致蛋白质稳态的丧失，从而促进线粒体质量和活性下降，线粒体的功能障碍反过来继续诱导干细胞中发生蛋白质聚集，造成代谢失调[7]。

图:导致再生能力受损的干细胞衰老机制

No.2

衰老细胞与SASP

什么是SASP

衰老(senescence)是细胞的一种归宿，其特征是生长潜力的丧失和表型改变，还会分泌由多种细胞因子、趋化因子、生物活性脂质、损伤相关分子模式（DAMP，也称警报素）共同组成的衰老相关分泌表型（SASP）。

在局部微环境中，SASP会非自主地作用于细胞，以改变相邻细胞的生物学行为，造成负面影响[8]。然而，衰老细胞分泌的特异性SASP因子还可以参与组织修复、创面愈合和再生过程，因此在二元论与拮抗多效性进化理论中，SASP还可被看做衰老程序中的有益功能[9]。

SASP在衰老细胞中的调控机制

衰老细胞可以在转录、mRNA稳定性、翻译和细胞外分泌等多个水平上调节SASP的表达[10]。在细胞质和核因子的调节过程中，转录因子GATA4在衰老细胞中积累并诱导上调IL1α和TRAF3IP2（编码E3的泛素连接酶），而细胞膜又与促炎蛋白白细胞介素1α(IL-1α)相结合，它们共同激活炎症相关NF-κB信号并放大SASP表达[11]。

此外，衰老细胞还可以通过先天免疫感应机制来触发SASP。释放到细胞质中的大量DNA片段通过募集平衡免疫反应的cGAS酶，通过cGAS-STING通路招募IRF3进行磷酸化[12]。磷酸化的IRF3二聚体进入细胞核，激活NF-κB信号通路从而产生I型IFNs，并启动其他免疫调节基因的转录，从而促进SASP的表达[13]。

图：衰老细胞的分子特征

No.3

线粒体衰老

什么是线粒体

线粒体作为细胞的“发电站”，可产生大量的三磷酸腺苷(ATP)应用于机体产能过程，其还可作为生物能量和生物合成等各种生物事件的信号枢纽，在大分子的生物合成、细胞凋亡、先天免疫反应和对压力的适应中发挥重要作用[14]。

线粒体衰老的机制

衰老细胞中的线粒体，往往会出现生物合成减少、形态网络改变、氧化磷酸化(OXPHOS)活性效率降低、mtDNA突变积累和ROS增加等生物反应[15]。并且受到损伤的线粒体又会通过改变分解和合成代谢反应的速率，从而导致ATP、烟酰胺腺嘌呤二核苷酸(NAD+)、α-酮戊二酸(α-KG)和ROS等代谢物发生含量变化，诱导细胞进一步衰老[16]。

• ROS信号：线粒体进行呼吸作用产生并累积的ROS，会引起机体的氧化损伤和细胞衰老[17]。

• 线粒体未折叠蛋白反应(UPR mt）：普遍认为UPR mt是一种线粒体与细胞核间的信号通路，在衰老过程中，染色质重塑和转录因子ATFS-1会诱导DNA编码的线粒体热休克蛋白和蛋白酶等基因群转录活化程序的应激反应，重建线粒体蛋白质稳态[18]。

• 自噬：线粒体自噬是其控制质量的一种途径，线粒体在自噬调节剂PINK1和PARKIN缺失时，会引发线粒体自噬缺陷和各种病理性后果，线粒体自噬缺陷在目前被认为是衰老的潜在驱动力[19]。

图：线粒体功能和衰老

No.4

代谢和内质网应激（营养感知）

营养感知途径诱导衰老

在衰老过程中，mTOR、AMPK和Sirtuins等营养传感机制，和胰岛素/IGF途径激素信号途径，以及内质网未折叠蛋白反应(UPR)等应激反应途径之间，发生持续的生理相互作用，多种内源性代谢物和分泌蛋白通过信号传导，破坏机体的代谢稳态，诱导衰老[20]。

诱导衰老的机制

• 营养传感机制：AMP活化蛋白激酶(AMPK)可被不同衰老干预下的细胞内AMP/ADP的变化所激活，有研究表明可通过维持线粒体稳态促进长寿，然而由于不同器官中AMPK蛋白复合物具有异质性，因此哺乳动物的AMPK活化与衰老之间的关系仍待确认[21]。

  而雷帕霉素靶蛋白(mTOR)可通过多种下游效应器（包括Akt、IRS和4EBP）调节胰岛素/IGF通路，对自噬和脂质代谢发挥关键调节作用[22]。

  此外，还有Sirtuins（SIRT1-7，一类NAD+依赖性脱乙酰酶）可以使胰岛素/IGF信号传导的主要成分（IRS、Akt和FoxO以及AMPK）去乙酰化，从而对线粒体活性和代谢稳态发挥不同的调节作用[23]。

• 激素信号网络：胰岛素/IGF通路可以通过体内多种胰岛素样肽(ILP)，触发PI3K/Akt轴的激活来抑制代谢器官中FoxO蛋白的转录活性，从而协调全身的能量吸收和合成代谢能力。此外，胰岛素/IGF信号还可以参与调节自噬、DNA修复、蛋白水解、蛋白质翻译、线粒体稳态和抗逆性的基因表达程序[24]。

• 应激反应途径：当细胞受到内源性或外源性应激时，UPRER信号无法通过增加伴侣蛋白折叠、调控蛋白质翻译和增强相关蛋白酶体降解(ERAD)来维持细胞稳态，导致蛋白质错误折叠或发生异常积累，从而诱导细胞衰老[25]。

图：衰老和长寿代谢控制中的营养感知和内质网应激反应

No.5

表观遗传学

什么是表观遗传学定义的衰老

表观遗传学所定义的衰老是“在不改变主要DNA序列的条件下，基因表达的可遗传和可逆变化，其中包括DNA甲基化、染色质重塑、组蛋白修饰、组蛋白变体和非编码RNA调控[26]。

表观遗传学涉及机制

• DNA甲基化：DNA甲基化是由DNA甲基转移酶(DNMT)进行的动态过程，并且在最近被公认为生物年龄的生物标志物。其中基于CpG位点的甲基化水平去估算生理年龄和细胞衰老程度的方式，被称为“表观遗传时钟”，有助于测量表观遗传漂移对人类组织和细胞类型衰老的累积影响[27]。

• 组蛋白变化：组蛋白乙酰化在调节衰老和促进长寿方面已被发现具有进化保守作用。例如，干细胞静止和自我更新所必需的组蛋白乙酰转移酶KAT7，被鉴定为细胞衰老的驱动因子和干预靶标；还有Sirtuins长寿蛋白，被发现参与多种信号通路（mTOR、NF-κB、FOXO和AMPK信号通路）从而调节各种物种细胞的衰老[28]。

• 染色质重塑：在衰老细胞中，异染色质因易受到抑制，而表现出结构性组蛋白修饰（H3K9me3和H4K20me3）丧失和染色质可及性增加，染色质松弛的状态促进发育受限基因的泄漏表达，并触发IFN-I反应和炎症，进一步诱导衰老。

图：衰老表观基因组示意图

No.6

端粒

为何可作为衰老标识

在衰老的过程中，由于细胞的末端DNA无法通过常规方法进行复制，导致端粒DNA经历一次次的细胞分裂过程而逐渐缩短，最终导致复制性衰老。也正是因为端粒一直处于不断缩短的动态发育过程中，因此它也被认为是衰老的驱动力[29]。

端粒和衰老间的作用机制

不健康的生活方式、压力、环境变化和感染等情况的出现，均会导致端粒缩短或结构受损，从而引发DNA损伤、氧化应激、基因表达改变、基因组不稳定性和细胞衰老等后果，并且当含有受损端粒的细胞在体内堆积时，又易导致激素失衡、炎症、免疫缺陷、代谢紊乱和加速衰老等问题[30]。

• Shelterin蛋白复合物：Shelterin蛋白复合物作为与端粒DNA结合的多亚基蛋白质复合物，具有多重功能，对抗非程序性细胞衰老，例如可促进端粒复制并协调端粒酶募集，延缓端粒缩短[31]。然而当Shelterin蛋白复合物发生功能障碍时，则会导致端粒和异染色质损伤，进而诱导细胞衰老甚至凋亡[32]。

• 端粒缩短与损伤：端粒被称为特别难以复制的区域（也被称为HTR位点），在受到复制应激时会产生染色体不稳定性，不过它们进化出了特定的机制免受脆性提高的影响，然而未受到保护的端粒还是会因缩短导致基因组丧失原本的完整性，这些过程触发细胞周期停滞、衰老、细胞凋亡等细胞过程[33]。

• 氧化应激：目前，新兴观点认为端粒功能障碍和氧化应激是直接耦合的现象，因为：（i）氧化应激直接导致端粒缩短[34]；(ii)端粒DNA上大量存在的8-oxoG（8-氧代鸟嘌呤，由鸟嘌呤氧化形成）很容易发生氧化效应，从而抑制端粒保护因子和端粒酶之间的结合，导致DNA断裂和端粒受损[35]；(iii)端粒功能障碍会激活p53信号通路，而p53信号通路会反过来结合并抑制PPARG共激活因子1α(PPARGC1A)和PPARGC1B启动子，诱导线粒体功能障碍[36]。

图：通过发育程序衰老的端粒生物学

No.7

基因组稳定性

基因组不稳定

随年龄的增加，基因组稳定性的保护机制逐渐遭到破坏，发生DNA损伤、反转录转座子激活、端粒磨损和复制应激等基因组不稳定现象，从而加速衰老过程[37]。

基因组不稳定机制

• DNA损伤：衰老引起DNA修复相关调节因子或蛋白（如ATM、XRCC1和SIRT6）的表达减少，受损DNA的修复效率下降，随年龄的增加，逐渐累积的受损DNA会进一步激活DDR（DNA损伤应答）和p53信号通路的传导，最终诱导细胞衰老和凋亡[38,39]。

• 逆转录转座子激活：人体中大约有45%的基因组都是由转座因子组成，研究发现，逆转录转座子可能通过多种机制导致年龄相关性疾病的产生。（i）转座事件可能会导致基因突变，进一步从遗传学上影响附近基因的表达；（ii）LINE-1（最活跃的逆转录转座子）的插入会破坏基因组稳定性，在表观遗传上影响基因表达，并可激活炎症反应；（iii）LINE-1的激活也与体细胞嵌合体有关，并进一步影响神经生物学过程[40]。

图：基因组稳定性和衰老的调节

通过第一章的学习，我们已经了解到，衰老与机体细胞稳态和功能的下降有关。因此在本章中，文章将进一步为我们讲述，随年龄增长，身体中多个组织/器官会发生怎样的特异性衰老，并探讨它们的衰老机制和有效干预措施。

No.1

血管

血管老化

循环系统可为身体中所有细胞输送氧气和营养物质，并带走组织器官中的二氧化碳和废物，对于维持内环境稳态至关重要。但伴随着年龄的增加，血管也开始呈现出形态、功能和分子标记方面的老化现象[41]。

在形态上，老化血管中的转化细胞（失去正常细胞特点）开始无限增殖，血管中弹性蛋白的断裂和胶原蛋白的沉积，使血管内膜层增厚，导致血管腔被扩大[37]。在功能上，老化血管的硬度会增加，收缩压升高，血管对内外源刺激的反应也逐渐下降[42]。在分子标识方面，老化血管上观察到端粒磨损、其他衰老标志物（如p53、p21、p16、ROS）和SASP相关基因的异常表达等现象[41]。

干预措施

• 经多年研究和临床验证，学界发现烟酰胺单核苷酸（NMN）、NR、二甲双胍、白藜芦醇和亚精胺等诸多小分子化合物，可有效预防与年龄相关的血管疾病[43]。

• 另有研究人员在血液置换研究中，将年轻血液中的血源性因子输送至老年血液，发现老化血管的退化表型得到有效逆转[44]。

• 目前，senolytics和干细胞疗法也被证明可延缓血管老化并治疗年龄相关的血管疾病[45]。

• 加强体力活动和进行热量限制同样有助于延缓血管老化[46]。

图：血管衰老和干预

No.2

大脑细胞的特异性老化

大脑的功能在衰老过程中会体现出学习和记忆力的下降，而脑细胞，包括神经元细胞和星形胶质细胞等非神经元细胞，也在衰老过程中表现出各自独特的衰老特征[47]。

• 神经元老化：神经元是有丝分裂后期的细胞，必须依赖除增殖停滞以外的其他基础才能被诱导衰老。其衰老特征则表现为磷酸化p38/MAPK(p-p38)、γH2AX表达升高，SA-β-Gal活性增加，以及脂褐质积累[48]。

• 星形胶质细胞老化：星形胶质细胞上的主要成分，也是反应性星形胶质细胞的标志——胶质纤维酸性蛋白(GFAP)，其表达会随着年龄的增长而增加，从而使星形胶质细胞出现增生现象[49]。研究发现，在衰老过程中，星形胶质细胞的表型变化会使其从静止状态过渡到活跃状态，引发记忆功能受损；而星形胶质细胞衰老引起的代谢变化也会引发神经元代谢紊乱。

• 小胶质细胞老化：小胶质细胞作为大脑中的常驻免疫细胞，衰老大脑中的小胶质细胞表现出炎症特征增加，包括促炎细胞因子，如TNFα、IL-1β和IL-6[50]。此外，随着年龄的增长，小胶质细胞的形态会发生去枝化或变为球状，也会加速大脑衰老进程。

图：大脑中不同细胞类型的衰老特征

No.3

肺部

人体的肺部功能从35岁开始逐渐下降，并出现气体交换受损、粘液纤毛清除力降低和免疫能力下降等肺部功能障碍[51]。其中，肺泡上皮细胞（尤其是I型肺泡上皮细胞(AEC1)和II型肺泡上皮细胞（AEC2）都容易受到与衰老相关的可持续性影响，使它们的数量减少，且间质沉积增加。目前已有研究表明，随年龄的增加，AEC1的增殖与凋亡比率会随之变化，并且AEC2的再生、自我更新和分化能力会逐渐下降[52]。

同时，协调肺部免疫反应的肺泡巨噬细胞(AMs)和间质巨噬细胞(IM)，也随着年龄的增长，表现出吞噬和清除能力下降、干扰素(IFN)受到顽固性激活等免疫降低迹象，并且肺部免疫细胞出现炎细胞浸润，从而诱导衰老[53]。

当然，还有更多的机制研究表明，端粒缩短、DNA损伤应答（DDR）、表观遗传改变、氧化应激反应和线粒体功能障碍所引起的干细胞衰竭，也是导致肺部细胞衰老的一大诱因[54]。

图：肺衰老的细胞表型

No.4

心脏

心脏老化

首先，心脏中占总重一半以上并维持收缩和舒张功能的心肌细胞，其数量会随年龄的增加而逐渐减少，与此同时，成纤维细胞的不断增殖又导致胶原蛋白沉淀的累积，大大促进了心脏纤维化和心脏功能障碍[55]。

此外，心脏衰老还涉及多种分子机制。其中最核心的原因就是蛋白质稳态失衡，随时间的增加，错误折叠蛋白逐渐增多、积累，导致伴侣蛋白、蛋白酶体、核糖体和线粒体蛋白的表达降低，和氧化应激相关蛋白的上调[56]。此时，大量产生的ROS开始伺机而动，打破线粒体融合和裂变的平衡，进一步破坏线粒体稳态，使心脏线粒体功能障碍和氧化损伤的风险增加[57]。

终生积累的遗传损伤会成为心脏衰老的导火索。除端粒缩短和端粒功能障碍已被证实会影响心脏的正常生理功能外，表观遗传改变也被发现会破坏心脏的氧化应激、血管生成和细胞代谢相关的转录程序，诱发炎症，从而促进心脏衰老[58]。

干预措施

目前，靶向线粒体功能障碍的抗氧化肽，已被证明可有效改善高血压性心肌病，而在动物模型中，热量限制也被发现对缓解心脏衰老和改善纤维化程度有显著疗效[59]。此外，还有小分子化合物、靶向抗衰老药物、干细胞疗法、不同形式的运动等多种心脏抗衰干预方法也正被应于临床。

表：/中列举出的与年龄相关的心脏病的临床实验数据

No.5

骨骼

骨骼衰老

骨骼结构会随着年龄的增长而退化，作为衰老过程的一个普遍特征，骨骼中胶原蛋白间的交联就会在衰老过程中发生变化，或者因晚期糖基化终产物的积累而受损。然而对于骨骼来说，发生在其上最常见的衰老相关的衰退性疾病，还当属骨质疏松症[84]。

在细胞层面，在绝经后骨质疏松症模型中发现，破骨细胞分泌的semaphin4D特异性抗体(SEMA4D)会介导破骨细胞与成骨细胞之间的交流，从而有效刺激成骨细胞的骨形成。并且，衰老过程会引起人体骨骼干细胞中去乙酰化酶1(SIRT1)表达的缺失，降低骨骼干细胞的分化潜能；此外，机体内已被老化的免疫细胞也会分泌促进炎症的大钙素(GCA)，使骨骼细胞受到炎症浸润而变性，大大增加骨骼细胞维持青春的难度[85]。

在基因层面，当DNA甲基化或组蛋白乙酰化和甲基化的改变时，例如H3K9me和H3K27me3的缺失，可诱导导致衰老过程的表观遗传变化[86]。

干预措施

长期以来，双膦酸盐和地诺塞麦这类可降低骨骼吸收、抑制破骨细胞活性的药物，被广泛应用于骨质疏松症的治疗，但它们同时具有骨形成减少和骨脆性增加的副作用。

目前，干细胞疗法已作为治疗骨质疏松症的有效方法。然而骨骼治疗过程中仍会存在炎症性衰老，影响干细胞活性。因此学界尝试在骨科手术之前选择性服用如非甾体类的抗炎药(NSAID)，以提高干细胞数量，并已在阻断骨细胞衰老、提高骨细胞合成代谢和提高干细胞数量等方面初见成效[87]。

当然，学界特别建议绝经后的女性和老年男性要注重日常运动[88]，可以在提高骨骼强度的同时减少脂肪量。

图：导致骨衰老的细胞机制示意图

No.6

骨骼肌

骨骼肌是由单核细胞和多核细胞（肌纤维）共同组成的细胞群，而骨骼肌细胞的衰老会引发肌肉质量和功能下降，并导致机体运动、呼吸、视力、热平衡、代谢稳态和免疫调节的失调[89]。

从细胞层面来看。随着年龄的增长，身为多核细胞的肌纤维的大小和收缩能力会随之下降，导致肌肉质量和功能的整体缺失。衰老的肌纤维中出现的代谢失衡（合成代谢减少和分解代谢增加）现象，导致肌原纤维蛋白被降解，进而会加重骨骼肌衰老[90]。

而单核细胞中，具有高度分化能力的肌肉干细胞（MuSCs），其上的衰老相关p38、MAPK信号通路被激活后，细胞周期抑制剂p16（INK4）也得到提高，导致MuSCs发生不对称分裂和自我更新受损，最终使骨骼肌的再生能力急剧下降[91]。

从基因层面来看。据统计，人体的MuSCs每年都会有13个基因组发生突变，随年龄的增长，不断累积的DNA突变导致DNA损伤效应，这时，DNA甲基化开始调节肌源基因的表达，抑制性染色质修饰基因H3K27me3在MuSCs中逐渐增加，MuSCs中的部分重要功能基因被抑制，最终使MuSCs出现功能障碍[92]。

而除了内源性变化引发骨骼肌细胞衰老外，其他微环境因子如NF-κB、IL-33和CCL-2水平的变化也会导致MuSCs的增殖和分化缺陷，导致衰老过程中肌肉损伤后的再生能力下降[93]。

图：骨骼肌衰老的主要机制

No.7

皮肤

皮肤作为人体最外层、最直观的器官，承担着保护、温度调节、感觉、免疫、社交等多种重要功能[45]。在组织学水平上，它的老化被分为以下形式：

• 真皮老化：皮肤中累积的活性氧可以刺激基质金属蛋白酶(MMPs)的表达，从而降解在皮肤弹性中起重要作用的胶原蛋白和弹性蛋白，使皮肤出现皱纹、松弛和下垂现象[94]。

• 表皮老化：目前，已在衰老的表皮细胞中发现了被激活的炎症基因，然而引发表皮衰老的机制仍未得到充分证实，因此有待继续研究[95]。

• 毛囊老化：研究发现，DNA损伤可导致衰老的毛囊细胞中的COL17A1蛋白被水解，导致头发的生长速度下降并开始脱落[96]。并且在衰老过程中，黑色素细胞也因受到内源和外源性损伤使头发变白[97]

图：皮肤衰老特征和机制的示意图

No.8

生殖系统

生殖系统衰老

生殖系统可以通过维持机体内分泌的稳态，保证健康后代的孕育并协调生理功能。对于女性来说，生殖系统的衰老往往出现在更年期，会表现在内分泌失调和代谢疾病风险的提高方面[98]。而男性的生殖衰老，则体现在随年龄的增长而逐渐下降的生育能力上[99]。

• 女性生殖衰老：女性的生殖系统主要包括卵巢、输卵管、子宫和阴道，其中，卵巢衰老被认为是导致女性生殖衰老的最关键因素。卵巢中数量有限的卵母细胞，其上的染色体凝聚力会随着年龄的增长而发生自然退化，导致纺锤体在减数分裂期间出现并附着大量错误的动粒-微管(K-MT)，从而发生染色体错误分离、染色单体过早分离和非整倍体频率提高等现象，生殖能力随之退化[100]。

  此外，子宫在长期、周期性地暴露于雌激素环境中时，慢性胶原的逐渐沉积也会引发子宫扩张和子宫纤维化等老化现象[101]。

• 男性生殖衰老：男性生殖系统的主要器官包括睾丸、附睾、输精管、前列腺和精囊，然而与女性不同的是，男性的生殖系统只会随年龄的增长出现轻、中度的衰老迹象[102]。其中就包括睾丸功能障碍（管径变窄、生精上皮变薄、基底膜增厚、马赛克样病变和纤维化增加）所引发的精子数量和质量的下降，以及精子中出现DNA损伤及片段化、突变和非整倍体增加等遗传质量降低的情况[102]。

表：两性生殖系统衰老的潜在机制

干预措施

• 女性：迄今为止，还没有任何一款技术得到逆转女性生殖衰老的临床认证。然而，达沙替尼和槲皮素等抗衰老药物已被发现可以有效去除卵巢中大量存在的ROS，并增强子宫的抗纤维化能力，因此，senotherapy也被认为是目前最有前途的干预措施[113]。此外，褪黑素也得到了增加生殖细胞端粒长度并减轻炎症的实验证实，还有线粒体替代疗法、核基因组转移和自体种系线粒体能量转移（AUGMENT）等技术已在进行临床安全性的评估[114]。

• 男性：多项研究表明，常见的口服抗氧化剂（如维生素 C、维生素 E、维生素 D、硒、叶酸、锌和肉碱）均可有效改善精子质量，褪黑素也可促进睾丸间质细胞的生长、增殖和能量代谢，从而提高精子浓度[115]。此外，还有槲皮素或白藜芦醇等抗衰补剂和药物，被发现可降低睾丸脂质过氧化程度并增加抗氧化酶活性。当然，除了这些药物治疗方法外，睾酮替代疗法也是一种常见的临床干预措施[116]。

No.9

肠道和微生物菌群

肠道的衰老过程，往往会伴随肠道菌群失调和肠道功能紊乱，而老化的肠道会体现出肠上皮干细胞（IESCs）过度增殖和功能障碍。而肠道衰老的另一个方面则是肠道屏障受损，其特征包含肠道通透性增加、结肠粘液层变薄和慢性炎症水平升高等特征[117]。

IESCs是位于肠隐窝处底部的多能细胞，调控着上皮细胞的更新和维持肠道稳态，研究发现，衰老果蝇肠道中存在IESCs的增殖升高和错误分化，以及ROS和ROS相关通路(如c-JunN-末端激酶(JNK)信号通路)的过度表达，这可能会破坏肠道稳态[118]。

此外，随年龄的变化，老化肠道内的微生物菌群也易发生失调，刺激肠道出现代谢紊乱，并提高患其他慢性疾病的风险[119]。

图：衰老的肠道和微生物群

No.10

免疫

衰老往往会伴随诸多老龄化疾病的出现，其原因就在于炎性的累积降低了机体对外来抗原和有害细胞的抵抗力，从而增加了患衰老相关疾病的风险，因此，这种随年龄的增加而引发的免疫功能障碍，被定义为生理性免疫衰老（PHIS）[120]。此外，还有一种通过病理性微环境诱导免疫细胞表现出同PHIS相似的衰老表型的途径，被称为病理性免疫衰老（PAIS）[121]。

PHIS的典型特征，表现为血液和组织中促炎标志物以及其他内源性损伤产物（如ATP、尿酸或循环DNA）水平的提高（俗称“炎症”）。炎症会促进细胞分泌IL-1、TNF、IL-6、IL-8、IL-13、IL-18、IFNα、IFNβ和TGF-β等一系列SASP，而SASP又可营造病理性微环境，导致免疫细胞群出现PAIS，从而促进疾病和衰老进展[120]。

图：免疫衰老的诱因、特征和后果

No.11

造血干细胞

造血干细胞（HSC）的衰老，主要由复制应激和DNA损伤、有毒副产物（如ROS）的积累、表观遗传修饰、微环境炎症等生物过程间的相互作用所导致[121]。

• 复制应激：HSC在衰老过程中由于受到内源性和外源性的压力，导致DNA出现一定程度的损伤，与年轻的HSC相比，衰老HSC具有相同的DNA修复能力，但功能潜力却得到减弱，这表明衰老HSC的功能下降主要是因为复制应激引起，而非DNA损伤[122]。

• ROS累积：在衰老过程中，造血干细胞线粒体呼吸作用的降低，导致了ROS的显著增加，而增多的ROS不仅会造成DNA的氧化损伤，还会降低蛋白质合成和相关信号的传导，从而发生线粒体功能障碍，加速造血干细胞的衰老[123]。

• 表观遗传修饰：衰老HSC中H4K16ac的变化往往与核体积增加、核内陷减少和11号染色体的分布相关，而异染色质的紊乱增加了染色质的可及性和基因表达泄漏，从而破坏衰老HSC的分化潜能和再生能力[124]。

• 炎症：与年龄相关的炎症增加是促进造血干细胞衰老的主要驱动力之一，而且衰老还伴随着多种促炎细胞因子(如TNF-α和IL-1β)的系统性水平升高，这也被称为慢性炎性衰老。越来越多的研究表明，炎症信号还可调节HSC增殖、分化、自我更新能力和衰老相关疾病[125]。

图：HSC衰老的标志

了解衰老，除了能更好地打破我们对“衰”和“老”的未知恐惧，并以科学性、系统性的思想对待衰老外，还能有力地推进衰老干预研究的进行。衰老研究的目标之一，就是能够实现对各种与年龄相关疾病的预防或干预，并延长健康寿命。

因此，本文也为我们总结了极具临床应用潜力的抗衰干预手段，例如使用基因疗法改变与衰老相关的基因、清除衰老细胞、人工智能（AI）预测。除此之外，本文还对可预测衰老的新技术领域进行了展望。

No.1

基因疗法

过去二十年间，基因编辑技术已能实现在基因组特定位置添加、删除或改变核苷酸序列；如今，它的应用拓展到了“延长寿命或健康期” [126]：

表：衰老干预的基因治疗方法

目前，基因疗法在靶向递送策略仍然是一个重大挑战，因此也在一定程度上限制了基因疗法的实际应用[52]。本文认为，虽然取得了许多有力的数据支撑，但将基因疗法运用于临床实践仍有很长的路要走。

No.2

抗衰药物

随着衰老研究的不断深入，许多小分子在延缓衰老的同时也加深了人们对衰老过程和机制的认识。然而，衰老是一个由多因素共同作用的复杂过程。目前，被学界广泛接受的衰老干预方向包括NAD+、VEGF、AMPK、衰老细胞、炎症、FOXO家族、胰岛素/IGF-1信号通路、PI3K-AKT信号通路、p16、p21等。下表列举了当前主要的衰老干预分子及其主要靶点：

表：抗衰药物和补剂

No.3

人工智能

面对无可避免的衰老，除了尽可能延长机体的健康寿命外，如果能对年龄和适用方式进行正确的筛选和预测，也将助力实现对衰老的有效干预。目前，人工智能和系统生物学已开始应用于抗衰药物的筛选：

• 人工智能技术，如卷积神经网络（CNN）和基于基因指纹和深度学习的药效预测系统DLEPS，可根据各种组学数据寻找衰老特的普遍征，从而筛选出正确的抗衰药物[148]。

• 系统生物学技术，将表观遗传时钟和定量组学数据进行同时开发，预测个体的生物年龄，可以对不同程度的衰老针对性地进行药物筛选[149]。

图：基于人工智能和系统生物学的衰老干预药物筛选的两个平行和协同方向

文章认为，随着数字化时代的到来，大众对于衰老领域的辅助研究和药物筛选的重视程度逐渐上升，未来，人工智能和生物学技术将会成为研究的热门方向和大热发展趋势[45]。

No.4

新技术领域

随技术的不断进步，现在针对抗衰的干预也出现了诸多先进技术，可以帮助我们更加深入地对单个分子到整个有机体的复杂衰老过程进行了解，并提供了一系列有效干预方案。

模型：

通过建立疾病和衰老相关的细胞、器官、组织和动物模型等，实现便捷的体外实验操作，可快速进行衰老机制研究和干预手段评估[150]。

单细胞组学技术：

衰老在不同个体、组织和细胞之间的体现具有极大差异，因此需要更精准的方式去剖析生物衰老中的异质性[151]。迄今为止，单细胞RNA测序技术已广泛应用于衰老研究，并帮助我们揭示了衰老在跨组织和物种之间的相互影响[152]。尽管单细胞蛋白质组学和代谢组学技术尚未应用于衰老的研究领域，但文章认为，它们在未来极有望实现对衰老过程进行深入机制理解的有效手段。

成像技术：

细胞衰老是一种复杂的现象，而成像技术可以最直观了解细胞衰老的发生和进展过程。目前，用于检测衰老细胞的主要成像技术是体内探针（细胞衰老的一般生物标志物）的实时跟踪[153]。此外，还有将成像结果与基因表达数据相结合的方式，也叫ST分析法，可以更加深入了解到细胞衰老的时空变化，目前，已应用成熟的ST分析技术有：下一代测序技术(NGS)、现场测序技术（ISS）和现场基于杂交的测序技术（ISH）[154]。

算法：

将多组学数据结合机器学习算法，可以通过对丰富的数据资源的开发，识别出潜在的生物标志物和干预目标，从而为衰老生物学的发展提供新见解[155]

时光派点评

在各领域研究学者的共同努力下，我们现在已经进入了一个最好的老龄化研究时代，众多预防、延缓甚至在某些情况下逆转衰老迹象的方式均得到有力证实。虽然本世纪能否通过生物医药技术实现人类寿命的延长仍是一个悬而未决的问题，但派派和众多学者们坚信，预防衰老、延缓人类健康寿命终必会在不久的将来真正实现。

愿世人“年老而不衰,智尽而不乱”。

由于篇幅所限，无法传达更多精彩内容，我们特将研究全文翻译，以飨大众。

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参考文献

[1]C López-Otín, Blasco, M. A. , Partridge, L. , Serrano, M. , & Kroemer, G. . (2013). The hallmarks of aging. Cell, 153(6), 1194-1217. /0.1016/j.cell.2013.05.039

[2]Vitale, I. , Manic, G. , Maria, R. D. , Kroemer, G. , & Galluzzi, L. . (2017). Dna damage in stem cells. Molecular Cell, 66(3), 306. /10.1016/j.molcel.2017.04.006

[3]Mani, C. , Reddy, P. H. , & Palle, K. . (2019). Dna repair fidelity in stem cell maintenance, health, and disease. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Molecular Basis of Disease. /10.1016/j.bbadis.2019.03.017

[4]Goukassian, D. , Gad, F. , Yaar, M. , Eller, M. S. , & Gilchrest, B. A. . (2000). Mechanisms and implications of the age-associated decrease in dna repair capacity. The FASEB Journal, 14(10), 1325-1334. /10.1096/fj.14.10.1325

[5]Zhao, H., Ji, Q., Wu, Z. (2022). Destabilizing heterochromatin by APOE mediates senescence. Nat Aging 2, 303–316. /10.1038/s43587-022-00186-z

[13]Cai, Y. , Zhou, H. , Zhu, Y. , Sun, Q. , Ji, Y. , & Xue, A. , et al. (2020). Elimination of senescent cells by β-galactosidase-targeted prodrug attenuates inflammation and restores physical function in aged mice. 细胞研究（英文版）, 2020年30卷7期, 574-589页, SCI SCIE MEDLINE ISTIC CSCD BP, the National Natural Science Foundation of China.

[14]García-Prat, L., Martínez-Vicente, M., Perdiguero, E. (2016). Autophagy maintains stemness by preventing senescence. Nature 529, 37–42. /10.1038/nature16187

[15]Cevenini, E. , Monti, D. , & Franceschi, C. . (2013). Inflamm-ageing. Current Opinion in Clinical Nutrition & Metabolic Care, 16(1), 14-20. /10.1097/MCO.0b013e32835ada13

[16]Childs, B., Gluscevic, M., Baker, D. (2017). Senescent cells: an emerging target for diseases of ageing. Nat Rev Drug Discov 16, 718–735. /10.1038/nrd.2017.116

[17]Malaquin, N. , Aurélie Martinez, & Rodier, F. . (2016). Keeping the senescence secretome under control: molecular reins on the senescence-associated secretory phenotype. Experimental gerontology, 82, 39-49. /10.1016/j.exger.2016.05.010

[18]Kuilman, T. , Michaloglou, C. , Vredeveld, L. , Douma, S. , Doorn, R. V. , & Desmet, C. J. , et al. (2008). Oncogene-induced senescence relayed by an interleukin-dependent inflammatory network. Cell, 133(6), 1019-1031. /10.1016/j.cell.2008.03.039

[19]Dou, Z., Ghosh, K., Vizioli, M. (2017). Cytoplasmic chromatin triggers inflammation in senescence and cancer. Nature 550, 402–406. /10.1038/nature24050

[20]Vizioli, M. G. , Liu, T. , Miller, K. N. , Robertson, N. A. , Gilroy, K. , & Lagnado, A. B. , et al. (2020). Mitochondria-to-nucleus retrograde signaling drives formation of cytoplasmic chromatin and inflammation in senescence. Genes & Development(5). /10.1101/GAD.331272.119

[21]Hood, D. A. , Memme, J. M. , Oliveira, A. N. , & Matthew, T. . (2018). Maintenance of skeletal muscle mitochondria in health, exercise, and aging. Annual Review of Physiology, 81(1), annurev-physiol-020518-114310-. /

10.1146/annurev-physiol-020518-114310

[22]Boengler, K. , Kosiol, M. , Mayr, M. , Schulz, R. , & Rohrbach, S. . (2017). Mitochondria and ageing: role in heart, skeletal muscle and adipose tissue. Journal of Cachexia Sarcopenia & Muscle. /10.1002/jcsm.12178

[23]C Bárcena, Mayoral, P. , & PM Quirós. (2018). Mitohormesis, an antiaging paradigm. International review of cell and molecular biology. /10.1016/bs.ircmb.2018.05.002

[24]Xiao, H. , Jedrychowski, M. P. , Schweppe, D. K. , Huttlin, E. L. , & Chouchani, E. T. . (2020). A quantitative tissue-specific landscape of protein redox regulation during aging. Cell, 180(5). /10.1016/j.cell.2020.02.012

[25]Zhang, Q., Wang, Z., Zhang, W. (2021). The memory of neuronal mitochondrial stress is inherited transgenerationally via elevated mitochondrial DNA levels. Nat Cell Biol 23, 870–880. /10.1038/s41556-021-00724-8

[26]Tomoyuki, Fukuda, Tomotake, & Kanki. (2018). Molecular mechanism and physiological functions of mitophagy in yeast. PLANT MORPHOLOGY, 30(1), 31-36. /10.5685/plmorphol.30.31

[27][1] Green, C. L. , Lamming, D. W. , & Fontana, L. . Molecular mechanisms of dietary restriction promoting health and longevity. Nature reviews. Molecular cell biology, 23(1), 56-73. /10.1038/s41580-021-00411-4

[28]Burkewitz, K. , Zhang, Y. , & Mair, W. . (2014). Ampk at the nexus of energetics and aging. Cell Metabolism, 20(1), 10-25. /10.1016/j.cmet.2014.03.002

[29]Albert, V. , & Hall, M. N. . (2015). Mtor signaling in cellular and organismal energetics. Current Opinion in Cell Biology, 33, 55-66. /10.1016/j.ceb.2014.12.001

[30]Chang, H. C. , & Guarente, L. . (2013). Sirt1 and other sirtuins in metabolism. Trends in Endocrinology and Metabolism, 25(3). /10.1016/j.tem.2013.12.001

[31]Partridge, L. , Alic, N. , Bjedov, I. , & Piper, M. D. W. . (2011). Ageing in drosophila: the role of the insulin/igf and tor signalling network. Experimental Gerontology, 46( 5), 376-381. /10.1016/j.exger.2010.09.003

[32]Martínez, G., Duran-Aniotz, C., Cabral-Miranda, F., Vivar, J.P. and Hetz, C. (2017), Endoplasmic reticulum proteostasis impairment in aging. Aging Cell, 16: 615-623. /10.1111/acel.12599

[33]JA Fafián-Labora, & O'Loghlen, A. . (2020). Classical and nonclassical intercellular communication in senescence and ageing. Trends in Cell Biology, 30(8). /10.1016/j.tcb.2020.05.003

[34]Horvath, S. , Haghani, A. , Peng, S. , Hales, E. N. , & Finno, C. J. . (2021). DNA methylation aging and transcriptomic studies in horses. Cold Spring Harbor Laboratory. /10.1101/2021.03.11.435032

[35]Ghanam, A. R. , Xu, Q. , Ke, S. , Muhammad, A. , Cheng, Q. , & Song, X. . (2017). Shining the light on senescence associated lncrnas. Aging & Disease, 8(2), 149-161. /10.14336/AD.2016.0810

[36]Gilson, E., Géli, V. (2007). How telomeres are replicated. Nat Rev Mol Cell Biol 8, 825–838 /10.1038/nrm2259

[37]Chakravarti, D. , Labella, K. A. , & Depinho, R. A. . (2021). Telomeres: history, health, and hallmarks of aging. Cell, 184(2). /10.1016/j.cell.2020.12.028

[38]Bilaud, T. , Koering, C. E. , Binet-Brasselet, E. , Ancelin, K. , Pollice, A. , & Gasser, S. M. , et al. (1996). The telobox, a myb-related telomeric dna binding motif found in proteins from yeast, plants and human. Nucleic Acids Research, 24(7), 1294-1303. /10.1093/nar/gkw064

[39]Doksani, Y. , Wu, J. , De?Lange, T. , & Zhuang, X. . (2013). Super-resolution fluorescence imaging of telomeres reveals trf2-dependent t-loop formation. Cell, 155(2), 345-356. /10.1016/j.cell.2013.09.048

[40]Tamura, Y. , Takubo, K. , Aida, J. , Araki, A. , & Ito, H. . (2016). Telomere attrition and diabetes mellitus. Geriatrics & Gerontology International, 16, 66-74. /10.1111/ggi.12738

[41]Demanelis, K. , Jasmine, F. , Chen, L. S. , Chernoff, M. , & Pierce, B. L. . (2019). Determinants of telomere length across human tissues.

/10.1101/793406

[42]Saretzki, G. , & Von, Z. T. . (2003). Telomerase as a promising target for human cancer gene therapy. Drugs of Today, 39(4), 265-76. /10.1358/dot.2003.39.4.799403

[43]Sahin, E. , Colla, S. , Liesa, M. , Moslehi, J. , FL Müller, & Guo, M. , et al. (2011). Erratum: telomere dysfunction induces metabolic and mitochondrial compromise (nature (2011) 470 (359-365)). Nature Publishing Group(7355). /10.1038/NATURE10223

[44]Liu, GH., Barkho, B., Ruiz, S. (2011). Recapitulation of premature ageing with iPSCs from Hutchinson–Gilford progeria syndrome. Nature 472, 221–225. /10.1038/nature09879

[45]Martel, J. , Ojcius, D. M. , Wu, C. Y. , Peng, H. H. , & Young, J. D. . (2020). Emerging use of senolytics and senomorphics against aging and chronic diseases. Medicinal Research Reviews, 48, 1-18. /10.1002/med.21702

[46]Schumacher, B. , Pothof, J. , Vijg, J. , & Hoeijmakers, J. . The central role of dna damage in the ageing process. Nature. /10.1038/s41586-021-03307-7

[47]Zhou, X. , Dou, Q. , Fan, G. , Zhang, Q. , & Gladyshev, V. N. . (2020). Beaver and naked mole rat genomes reveal common paths to longevity. Cell Reports, 32(4), 107949. /10.1016/j.celrep.2020.107949

[48]Tian, X. L. , & Li, Y. . (2014). Endothelial cell senescence and age-related vascular diseases. 遗传学报：英文版(9), 11. /10.1016/j.jgg.2014.08.001

[49]Vanhoutte, P. M. . (1988). Aging and vascular responsiveness. Journal of Cardiovascular Pharmacology, 12(Supplement), S11-S18. /10.1097/00005344-198812081-00004

[50]Bonkowski, M. S. , Das, A. , Schultz, M. , Lu, Y. , Mitchell, J. , & Wu, L. , et al. (2018). Impairment of an endothelial nad+-h2s signaling network is a reversible cause of vascular aging. Innovation in Aging, 2(suppl_1), 388-388. /10.1093/geroni/igy023.1446

[51]Yusheng Cai, Wei Song, Jiaming Li. (2022) The landscape of aging, In Journal of SCIENCE CHINA Life Sciences, ISSN 1674-7305, /10.1007/s11427-022-2161-3.

[52]Magalh?Es, J. D. , Stevens, M. , & Thornton, D. . (2017). The business of anti-aging science. Trends in Biotechnology, S0167779917301713. /10.1016/j.tibtech.2017.07.004

[53]Miguel, Z. , Khoury, N. , Betley, M. J. , Lehallier, B. , Willoughby, D. , & Olsson, N. , et al. Exercise plasma boosts memory and dampens brain inflammation via clusterin. Nature. /10.1038/s41586-021-04183-x

[54]Salas, I. H. , Burgado, J. , & Allen, N. J. . (2020). Glia: victims or villains of the aging brain?. Neurobiology of Disease, 143. /10.1016/j.nbd.2020.105008

[55]Morrison, J. H. , & Baxter, M. G. . (2012). The ageing cortical synapse: hallmarks and implications for cognitive decline. Nature Reviews Neuroscience, 13, 240-50. /10.1038/nrn3200

[56]Allen, N. J. , & Barres, B. A. . (2009). Glia - more than just brain glue. Nature, 457(7230), p.675-677. /10.1038/457675a

[57]Grabert, K. , Michoel, T. , Karavolos, M. H. , Clohisey, S. , Baillie, J. K. , & Stevens, M. P. , et al. Microglial brain region−dependent diversity and selective regional sensitivities to aging. Nature Neuroscience. /10.1038/nn.4222

[58]Gulshan, S. , & James, G. . (2006). Effect of aging on respiratory system physiology and immunology. Clinical Interventions in Aging, 1(3). /10.2147/ciia.2006.1.3.253

[59]Watson, J.K., Sanders, P., Dunmore, R. (2020). Distal lung epithelial progenitor cell function declines with age. Sci Rep 10, 10490. /10.1038/s41598-020-66966-y

[60]Yanai, H. , Shteinberg, A. , Porat, Z. , Budovsky, A. , & Fraifeld, V. E. . (2015). Cellular senescence-like features of lung fibroblasts derived from idiopathic pulmonary fibrosis patients. Aging, 7(9), 664-672. /10.18632/aging.100807

[61]Hansel, C. , Jendrossek, V. , & Klein, D. . (2020). Cellular senescence in the lung: the central role of senescent epithelial cells. International Journal of Molecular Sciences, 21(9), 3279. /10.3390/ijms21093279

[62]Donekal, S. , Venkatesh, B. A. , Yuan, C. L. , Liu, C. Y. , & Lima, J. A. C. . (2014). Interstitial fibrosis, left ventricular remodeling, and myocardial mechanical behavior in a population-based multiethnic cohort: the multi-ethnic study of atherosclerosis (mesa) study. Circulation Cardiovascular Imaging, 7(2), 292. /10.1161/CIRCIMAGING.113.001073

[63]Vilchez, D., Saez, I. & Dillin, A. (2014). The role of protein clearance mechanisms in organismal ageing and age-related diseases. Nat Commun 5, 5659. /10.1038/ncomms6659

[64]Zhang, Q. , Li, D. , Dong, X. , Zhang, X. , Liu, J. , & Peng, L. , et al. (2022). Lncdach1 promotes mitochondrial oxidative stress of cardiomyocytes by interacting with sirtuin3 and aggravates diabetic cardiomyopathy. 中国科学(065-006). /0.1007/s11427-021-1982-8

[65]Costantino, S. , Paneni, F. , & Cosentino, F. . (2015). Targeting chromatin remodeling to prevent cardiovascular disease in diabetes. Current Pharmaceutical Biotechnology, 16(6). /10.2174/138920101606150407113644

[66]Lucia, C. D. , Gambino, G. , Petraglia, L. , Elia, A. , Komici, K. , & Femminella, G. D. , et al. (2018). Long-term caloric restriction improves cardiac function, remodeling, adrenergic responsiveness, and sympathetic innervation in a model of postischemic heart failure. Circulation Heart Failure, 11(3), e004153. /10.1161/CIRCHEARTFAILURE.117.004153

[67]Singh, M. , M.D. Jensen, Lerman, A. , Kushwaha, S. , & Kirkland, J. L. . (2016). Effect of low-dose rapamycin on senescence markers and physical functioning in older adults with coronary artery disease: results of a pilot study. Journal of Frailty & Aging, 5(4), 204. /10.14283/jfa.2016.112

[68]Dragulescu, I. S. . (2014). Ivabradine in stable coronary artery disease without clinical heart failure. New England Journal of Medicine, 371, 1091-1099. /10.1056/NEJMoa1406430

[69]David Erlinge, Paul A. Gurbel, Stefan James. (2013). Prasugrel 5 mg in the Very Elderly Attenuates Platelet Inhibition But Maintains Noninferiority to Prasugrel 10 mg in Nonelderly Patients: The GENERATIONS Trial, A Pharmacodynamic and Pharmacokinetic Study in Stable Coronary Artery Disease Patients, Journal of the American College of Cardiology, Volume 62, Issue 7, Pages 577-583. /10.1016/j.jacc.2013.05.023.

[70]Mg, A. , Kq, A. , Lw, A. , Rh, B. , Tb, A. , & Edv, C. , et al. (2020). Clopidogrel versus ticagrelor or prasugrel in patients aged 70 years or older with non-st-elevation acute coronary syndrome (popular age): the randomised, open-label, non-inferiority trial - sciencedirect. /10.1016/S0140-6736(20)30325-1

[71]Wlosinska, M. , Nilsson, A. C. , Hlebowicz, J. , Fakhro, M. , & Lindstedt, S. . (2021). Aged garlic extract reduces il-6: a double-blind placebo-controlled trial in females with a low risk of cardiovascular disease. Evidence-based Complementary and Alternative Medicine, 2021(5), 1-9. /10.1155/2021/6636875

[72]Budoff, M. J. , Takasu, J. , Flores, F. R. , Niihara, Y. , Lu, B. , & Lau, B. H. , et al. (2004). Inhibiting progression of coronary calcification using aged garlic extract in patients receiving statin therapy: a preliminary study. Preventive Medicine, 39(5), 985-991. /10.1016/j.ypmed.2004.04.012

[73]Andersen, & Mads, J. . (2013). Sildenafil and diastolic dysfunction after acute myocardial infarction in patients with preserved ejection fraction the sildenafil and diastolic dysfunction after acute myocardial infarction (sidami) trial. Circulation. /10.1161/CIRCULATIONAHA.112.000056

[74]Kalstad, A. A. , Myhre, P. L. , aake, K. , Tveit, S. H. , Schmidt, E. B. , & Smith, P. , et al. (2021). Effects of n-3 fatty acid supplements in elderly patients after myocardial infarction: a randomized, controlled trial. Lippincott Williams & WilkinsHagerstown, MD(6). /10.1161/CIRCULATIONAHA.120.052209

[75]Wu, J. , Wang, J. , Jiang, S. , Xu, J. , Di, Q. , & Zhou, C. , et al. (2013). The efficacy and safety of low intensity warfarin therapy in chinese elderly atrial fibrillation patients with high chads2 risk score. International Journal of Cardiology, 167(6), 3067-3068. /10.1016/j.ijcard.2012.11.078

[76]Okumura, K. , Akao, M. , Yoshida, T. , Kawata, M. , & Yamashita, T. . (2020). Low-dose edoxaban in very elderly patients with atrial fibrillation. New England Journal of Medicine, 383(18). /10.1056/NEJMoa2012883

[77]Pellicori P., Ferreira J.P., Mariottoni B.. (2020). Effects of spironolactone on serum markers of fibrosis in people at high risk of developing heart failure: rationale, design and baseline characteristics of a proof‐of‐concept, randomised, precision-medicine, prevention trial. The Heart OMics in AGing (HOMAGE) trial. Eur J Heart Fail, 22: 1711-1723. 2020. /10.1002/ejhf.1716

[78]Daniel K.R., Wells G., Stewart K.. (2009). Effect of aldosterone antagonism on exercise tolerance, Doppler diastolic function, and quality of life in older women with diastolic heart failure. Congestive Heart Failure, 15: 68-74. /10.1111/j.1751-7133.2009.00056.x

[79]Yoram, A. , Jonathan, L. , & Reisner, S. A. . (2009). Heart failure with a normal ejection fraction. BMJ, 338(2), 155. /10.1136/hrt.2005.074187

[80]Kitzman, D. W. , Herrington, D. M. , Brubaker, P. H. , Moore, J. B. , Eggebeen, J. , & Haykowsky, M. J. . (2013). Carotid arterial stiffness and its relationship to exercise intolerance in older patients with heart failure and preserved ejection fraction. Hypertension, 61(1), 112. /10.1161/HYPERTENSIONAHA.111.00163

[81]Gielert, & Stephan. (2012). Exercise training attenuates murf-1 expression in the skeletal muscle of patients with chronic heart failure independent of age. Circulation. /10.1161/CIRCULATIONAHA.111.047381

[82]Paschalis V., Nikolaidis M.G., Theodorou A.A.. (2011) A weekly bout of eccentric exercise is sufficient to induce health-promoting effects. Med Sci Sports Exercise, 2011, 43: 64-73. /10.1249/MSS.0b013e3181e91d90

[83][1] Ozasa, N. , Morimoto, T. , Bao, B. , Shioi, T. , & Kimura, T. . (2012). Effects of machine-assisted cycling on exercise capacity and endothelial function in elderly patients with heart failure. Circulation Journal, 76(8), 1889-94. /10.1253/circj.CJ-11-1113

[84]Mjsmm, A. , Mbnm, A. , Tjs, B. , Dwk, A. , Pb, C. , & Mjh, D. , et al. (2021). Left Atrial Stiffness Index Independently Predicts Exercise Intolerance and Quality of Life in Older Patients with Obese HFpEF. J Cardiac Failure, 28: 567-575. /10.1016/j.cardfail.2021.10.010

[85]Fujimoto, N. , Hastings, J. L. , Carrick-Ranson, G. , Shafer, K. M. , Shibata, S. , & Bhella, P. S. , et al. (2013). Cardiovascular effects of 1 year of alagebrium and endurance exercise training in healthy older individuals. Journal of the American College of Cardiology, 61(10), E1257-E1257. /10.1016/S0735-1097(13)61257-7

[86]Gail, A., Haldeman, and, Janet, & B., et al. (1999). Hospitalization of patients with heart failure: national hospital discharge survey, 1985 to 1995. Am Heart J, 137: 352-360. /10.1053/hj.1999.v137.95495

[87]Parikh, J. D. , Hollingsworth, K. G. , Kunadian, V. , Blamire, A. , & Macgowan, G. A. . (2016). Measurement of pulse wave velocity in normal ageing: comparison of vicorder and magnetic resonance phase contrast imaging. BMC Cardiovascular Disorders, 16(1), 1-7. /10.1186/s12872-016-0224-4

[88]Ua, A. , Ja, B. , Ja, C. , Pj, D. , & Al, E. . Supplemental selenium and coenzyme q10 reduce glycation along with cardiovascular mortality in an elderly population with low selenium status – a four-year, prospective, randomised, double-blind placebo-controlled trial - sciencedirect. Journal of Trace Elements in Medicine and Biology, 61: 126541. /10.1016/j.jtemb.2020.126541

[89]Lukas, S. , Waheed, K. A. , Arne, D. , Shafaat, H. , Rosa, S. , & Andre, T. , et al. (2019). High-intensity interval training modulates retinal microvascular phenotype and dna methylation of p66 shc gene: a randomized controlled trial (examin age). European Heart Journal(15), 41: 1514-1519. /10.1093/eurheartj/ehz196

[90]Molmen, H. E. , Wisloff, U. , Aamot, I. L. , Stoylen, A. , & Ingul, C. B. . (2012). Aerobic interval training compensates age related decline in cardiac function. Scandinavian cardiovascular journal: SCJ, 46(3), 163-171. /10.3109/14017431.2012.660192

[91]Friedman S.M., Mendelson D.A.. (2014). Epidemiology of fragility fractures. Clin Geriatric Med, 30: 175-181. /10.1016/j.cger.2014.01.001

[92]Ambrosi, T.H., Marecic, O., McArdle, A. (2021). Aged skeletal stem cells generate an inflammatory degenerative niche. Nature 597, 256–262. /10.1038/s41586-021-03795-7

[93]Deng, P. , Yuan, Q. , Cheng, Y. , Li, J. , & Wang, C. Y. . (2021). Loss of kdm4b exacerbates bone-fat imbalance and mesenchymal stromal cell exhaustion in skeletal aging. Cell Stem Cell, 28: 1057-1073.e7. /10.1016/j.stem.2021.01.010

[94]Josephson A.M., Bradaschia-Correa V., Lee S.. (2019). Age-related inflammation triggers skeletal stem/progenitor cell dysfunction. Proc Natl Acad Sci USA, 116: 6995-7004. /0.1073/pnas.1810692116

[95]Hinton, P. S. , Nigh, P. , & Thyfault, J. . (2015). Effectiveness of resistance training or jumping-exercise to increase bone mineral density in men with low bone mass: a 12-month randomized, clinical trial. Bone, 79, 203-212. /10.1016/j.bone.2015.06.008

[96]Englund, D. A. , Zhang, X. , Aversa, Z. , & Lebrasseur, N. K. . (2021). Skeletal muscle aging, cellular senescence, and senotherapeutics: current knowledge and future directions. Mechanisms of Ageing and Development, 200, 111595. /10.1016/j.mad.2021.111595

[97]Fealy, C. E. , Grevendonk, L. , Hoeks, J. , & Hesselink, M. . (2021). Skeletal muscle mitochondrial network dynamics in metabolic disorders and aging. Trends in Molecular Medicine, 27: 1033-1044. /10.1016/j.molmed.2021.07.013

[98]Brack, AS, Conboy, MJ, Roy, & S, et al. (2007). Increased wnt signaling during aging alters muscle stem cell fate and increases fibrosis. Science, 317: 807-810. /10.1126/science.1144090

[99]Manisha, Sinha, Young, C. , Jang, Juhyun, & Oh, et al. (2014). Restoring systemic gdf11 levels reverses age-related dysfunction in mouse skeletal muscle. Science (New York, N.Y.), 344: 649-652. /10.1126/science.1251152

[100]Blanc R.S., Kallenbach J.G., Bachman J.F.. (2020). Inhibition of inflammatory CCR2 signaling promotes aged muscle regeneration and strength recovery after injury. Nat Commun, 11: 4167. /10.1038/s41467-020-17620-8

[101]Haydont V., Bernard B.A., Fortunel N.O.. (2019). Age-related evolutions of the dermis: clinical signs, fibroblast and extracellular matrix dynamics. Mech Ageing Dev, 177: 150-156. /10.1016/j.mad.2018.03.006

[102]Ge, Y. , & Fuchs, E. . (2018). Abstract b24: stem cell lineage infidelity drives wound repair and cancer. Cancer Research, 78(10 Supplement), 169: 636-650.e14. /10.1158/1538-7445.MOUSEMODELS17-B24

[103]Matsumura, H. , Mohri, Y. , Binh, N. T. , Morinaga, H. , Fukuda, M. , & Ito, M. , et al. (2016). Hair follicle aging is driven by transepidermal elimination of stem cells via col17a1 proteolysis. Science, 351(6273), aad4395. /10.1126/science.aad4395

[104]Rosenberg, A. , Rausser, S. , Ren, J. , Mosharov, E. , Sturm, G. M. , & Ogden, R. T. , et al. (2021). Quantitative mapping of human hair graying and reversal in relation to life stress. eLife, 10: e67437. /10.1101/2020.05.18.101964

[105]Laura, S. , Michela, B. , Michael, V. , & Marco, D. . (2021). The role of cellular senescence in female reproductive aging and the potential for senotherapeutic interventions. Human Reproduction Update(2),28: 172-189. /10.1093/humupd/dmab038

[106]Gruenewald, D. A. . (2004). Aging and the male reproductive system. Encyclopedia of Endocrine Diseases, 122-125. /10.1016/B0-12-475570-4/00050-0

[107]Volkan, T. , & Kutluk, O. . (2019). Brca-related atm-mediated dna double-strand break repair and ovarian aging. Human Reproduction Update(1), 26: 43-57. /10.1093/humupd/dmz043

[108]Brighton, P. J. , Maruyama, Y. , Fishwick, K. , Vrljicak, P. , & Brosens, J. J. . (2017). Clearance of senescent decidual cells by uterine natural killer cells in cycling human endometrium. eLife Sciences, 6: e31274. /10.7554/eLife.31274

[109]Yatsenko A.N., Turek P.J.. (2018). Reproductive genetics and the aging male. J Assist Reprod Genet, 35: 933-941. /10.1007/s10815-018-1148-y

[110]Wise, P. M. . (1998). Female reproductive aging. INTERDISCIPLINARY TOPICS IN GERONTOLOGY, 29. /10.1159/000061423

[111]Kalmbach, K. H. , Antunes, D. F. , Dracxler, R. C. , Knier, T. W. , Seth-Smith, M. L. , & Wang, F. , et al. (2013). Telomeres and human reproduction. Fertility & Sterility, 99(1), 23-29. /10.1016/j.fertnstert.2012.11.039

[112]Li, C. J. , Lin, L. T. , Tsai, H. W. , Chern, C. U. , Wen, Z. H. , & Wang, P. H. , et al. (2021). The molecular regulation in the pathophysiology in ovarian aging. Aging and Disease, 12(3), 934-949. /10.14336/AD.2020.1113

[113]Jlc, A. , Psb, C. , Kp, D. , Nsae, F. , Sk, E. , & Ddg, A. , et al. (2020). Mitochondria in ovarian aging and reproductive longevity. Ageing Research Reviews, 63: 101168. /10.1016/j.arr.2020.101168

[114]Lliberos, C. , Seng, H. L. , Mansell, A. , & Hutt, K. J. . (2021). The inflammasome contributes to depletion of the ovarian reserve during aging in mice. Frontiers in Cell and Developmental Biology, 8, 628473. /10.3389/fcell.2020.628473

[115]Cavalcante, M. B. , Saccon, T. D. , Nunes, A. , Kirkland, J. L. , & Masternak, M. M. . (2020). Dasatinib plus quercetin prevents uterine age-related dysfunction and fibrosis in mice. Aging, 12(3): 2711-2722. /10.18632/aging.102772

[116]Brighton, P. J. , Maruyama, Y. , Fishwick, K. , Vrljicak, P. , & Brosens, J. J. . (2017). Clearance of senescent decidual cells by uterine natural killer cells in cycling human endometrium. eLife Sciences, 6: e31274. /10.7554/eLife.31274

[117]A, M. C. B. , A, L. A. , E, V. P. B. C. D. , A, H. C. , & A, B. R. Z. . (2015). Leydig cell aging and hypogonadism. Experimental Gerontology, 68, 87-91. /10.1016/j.exger.2015.02.014

[118]Saab, C. , Fta, D. , Mna, B. , Fsa, C. , & Msa, C. . (2022). Sodium arsenite accelerates d-galactose-induced aging in the testis of the rat: evidence for mitochondrial oxidative damage, nf-kb, jnk, and apoptosis pathways. Toxicology, 470, 153148. /10.1016/j.tox.2022.153148

[119]Zhao, H. , Ma, N. , Chen, Q. , You, X. , & Zhang, C. . (2019). Decline in testicular function in ageing rats: changes in the unfolded protein response and mitochondrial apoptotic pathway. Experimental Gerontology, 127, 110721. /10.1016/j.exger.2019.110721

[120]Wang, J. , Qian, X. , Qiang, G. , Lv, C. , Jie, X. , & Jin, H. , et al. (2018). Quercetin increases the antioxidant capacity of the ovary in menopausal rats and in ovarian granulosa cell culture in vitro. Journal of Ovarian Research, 11(1), 51. /10.1186/s13048-018-0421-0

[121]Reddy, P. , Ocampo, A. , Suzuki, K. , Luo, J. , Bacman, S. , & Williams, S. , et al. (2015). Selective elimination of mitochondrial mutations in the germline by genome editing. Cell, 161(3), 459-469. /10.1016/j.cell.2015.03.051

[122]Plessis, S. . (2021). The role of selected natural biomolecules in sperm production and functionality. Molecules, 26: 5196. /10.3390/molecules26175196

[123]Al-Hazaa, M. A. . (2021). Neurological alterations and testicular damages in aging induced by d-galactose and neuro and testicular protective effects of combinations of chitosan nanoparticles, resveratrol and quercetin in male mice. Coatings, 11:435. /10.3390/coatings11040435

[124]Branca, J. , Gulisano, M. , & Nicoletti, C. . (2019). Intestinal epithelial barrier functions in ageing. Ageing Research Reviews, 54, 100938. /10.1016/j.arr.2019.100938

[125]O'Toole, P. W. ,& Jeffery, I. B. . (2015). Gut microbiota and aging. Science, 350(6265), 1214-1215. /10.1126/science.aac8469

[126]Calcinotto, A. , Kohli, J. , Zagato, E. , Pellegrini, L. , Demaria, M. , & Alimonti, A. . (2019). Cellular senescence: aging, cancer, and injury. Physiological Reviews, 99(2), 1047-1078. /10.1152/physrev.00020.2018

[127]Eicke, Latz, Peter, & Duewell. (2018). Nlrp3 inflammasome activation in inflammaging. Seminars in immunology. 40: 61-73. /10.1016/j.smim.2018.09.001

[128]Mejia-Ramirez, E. , & Florian, M. C. . (2020). Understanding intrinsic hematopoietic stem cell aging. Haematologica(1), 105: 22-37. /10.3324/HAEMATOL.2018.211342

[129]Le, B. M. , Bourke, E. , Barry, H. K. , Morrison, C. G. , Warr, M. R. , & Alexander, D. , et al. (2010). Hematopoietic stem cell quiescence promotes error-prone DNA repair and mutagenesis. Cell Stem Cell, 2010, 7: 174-185. /10.1016/j.stem.2010.06.014

[130]Ito, K. , & Suda, T. (2014). Metabolic requirements for the maintenance of self-renewing stem cells. Nature Reviews Molecular Cell Biology, 15: 243-256. /10.1038/nrm3772

[131]Grigoryan A., Guidi N., Senger K., Liehr T., Soller K., Marka G., Vollmer A., Markaki Y., Leonhardt H., Buske C.. (2018). LaminA/C regulates epigenetic and chromatin architecture changes upon aging of hematopoietic stem cells. Genome Biol, 19: 189. /10.1093/humupd/dmz043

[132]Sezaki, M. , Hayashi, Y. , Wang, Y. , Johansson, A. , & Takizawa, H. (2020). Immuno-modulation of hematopoietic stem and progenitor cells in inflammation. Frontiers in Immunology, 11. /10.3389/fimmu.2020.585367

[133]Kurosu, H. , Yamamoto, M. , Clark, J. D. , Pastor, J. V. , Gurnani, P. , & Mcguinness, O. P. , et al. (2008). Suppression of aging in mice by the hormone klotho. , 309(5742), 1829-1833. /10.1126/science.1112766.Suppression

[134]Childs B.G., Gluscevic M., Baker D.J., Laberge R.M., Marquess D., Dananberg J., van Deursen J.M.. (2017). Senescent cells: an emerging target for diseases of ageing. Nat Rev Drug Discov, 16: 718-735. /10.1038/nrd.2017.116

[135]Chang, J. , Wang, Y. , Shao, L. , Laberge, R. M. , Demaria, M. , & Campisi, J. , et al. (2016). Clearance of senescent cells by abt263 rejuvenates aged hematopoietic stem cells in mice. Nature Medicine,22: 78-83. /10.1038/nm.4010

[136]Fuhrmann-Stroissnigg, H., Ling, Y.Y., Zhao, J. (2017). Identification of HSP90 inhibitors as a novel class of senolytics. Nat Commun 8, 422. /10.1038/s41467-017-00314-z

[137]Guerrero, A., Herranz, N., Sun, B. (2019). Cardiac glycosides are broad-spectrum senolytics.Nat Metab1, 1074–1088 /10.1038/s42255-019-0122-z

[138]Baar M.P., Brandt R.M.C., Putavet D.A., Klein J.D.D., Derks K.W.J., Bourgeois B.R.M., Stryeck S., Rijksen Y., van Willigenburg H., Feijtel D.A.. (2017). Targeted apoptosis of senescent cells restores tissue homeostasis in response to chemotoxicity and aging. Cell, 169: 132-147.e16. /10.1016/j.cell.2017.02.031

[139]Chen, T. , Wang, F. , Wei, S. , Nie, Y. , Zheng, X. , & Deng, Y. , et al. (2021). Fgfr/rack1 interacts with mdm2, promotes p53 degradation, and inhibits cell senescence in lung squamous cell carcinoma. 癌症生物学与医学:英文版, 18(3), 10. /10.20892/j.issn.2095-3941.2020.0389

[140]Cai, Y., Zhou, H., Zhu, Y. (2020). Elimination of senescent cells by β-galactosidase-targeted prodrug attenuates inflammation and restores physical function in aged mice. Cell Res 30, 574–589 /10.1038/s41422-020-0314-9

[141]Covarrubias, A.J., Perrone, R., Grozio, A. (2021). NAD+ metabolism and its roles in cellular processes during ageing. Nat Rev Mol Cell Biol 22, 119–141 . /10.1038/s41580-020-00313-x

[142]Wang G., Han T., Nijhawan D., Theodoropoulos P. (2014). P7c3 neuroprotective chemicals function by activating the rate-limiting enzyme in nad salvage. Cell, 158(6), 1324–1334. /10.1016/j.cell.2014.07.040

[143]Katsyuba E., Mottis A., Zietak M. (2018). De novo nad+ synthesis enhances mitochondrial function and improves health. Nature, 563: 354-359. /10.1038/s41586-018-0645-6

[144]Chini, E. N. , Chini, C. , Netto, J. , Oliveira, G. , & Schooten, W. V. . (2018). The pharmacology of cd38/nadase: an emerging target in cancer and diseases of aging. Trends in Pharmacological Sciences, 39(4): 424-436. /10.1016/j.tips.2018.02.001

[145]Hughes, R. O. , Bosanac, T. , Mao, X. , Engber, T. M. , Diantonio, A. , & Milbrandt, J. , et al. (2021). Small molecule sarm1 inhibitors recapitulate the sarm1 / phenotype and allow recovery of a metastable pool of axons fated to degenerate. Cell Reports, 34(1), 108588./10.1016/j.celrep.2020.108588

[146]Baur, J., Pearson, K., Price, N. (2006). Resveratrol improves health and survival of mice on a high-calorie diet. Nature 444, 337–342. /10.1038/nature05354

[147]Tain, L. S. , Jain, C. , Nespital, T. , Froehlich, J. , & Partridge, L. . (2020). Longevity in response to lowered insulin signaling requires glycine n‐methyltransferase‐dependent spermidine production. Aging Cell, 19(12):e13043. /10.1111/acel.13043

[148]Harrison D.E., Strong R., Alavez S., Astle C.M., DiGiovanni J., Fernandez E., Flurkey K., Garratt M., Gelfond J.A.L., Javors M.A.. (2019). Acarbose improves health and lifespan in aging HET3 mice. Aging Cell, 18: e12898. /10.1111/acel.12898

[149]Kraig, E. , Linehan, L. A. , Liang, H. , Romo, T. Q. , Liu, Q. , & Wu, Y. , et al. (2018). A randomized control trial to establish the feasibility and safety of rapamycin treatment in an older human cohort: immunological, physical performance, and cognitive effects. Experimental Gerontology, 105: 53-69. /10.1016/j.exger.2017.12.026

[150]Dalal, M. , & Naima Jacobs-El. (2013). Subconjunctival palomid 529 in the treatment of neovascular age-related macular degeneration. Graefe's Archive for Clinical and Experimental Ophthalmology, 251(12), 2705-2709. /10.1007/s00417-013-2375-7

[151]Campbell, J. M. , Bellman, S. M. , MD Stephenson, & Lisy, K. . (2017). Metformin reduces all-cause mortality and diseases of ageing independent of its effect on diabetes control: a systematic review and meta-analysis. Ageing Research Reviews, 40, 31-44. /10.1016/j.arr.2017.08.003

[152]Cao Y., Nishihara R., Wu K., Wang M., Ogino S., Willett W.C., Spiegelman D., Fuchs C.S., Giovannucci E.L., Chan A.T.. (2016). Population-wide impact of long-term use of aspirin and the risk for cancer. JAMA Oncol, 2: 762-769. /10.1001/jamaoncol.2015.6396

[153]Daniel, M. , & Tollefsbol, T. O. . (2015). Epigenetic linkage of aging, cancer and nutrition. Journal of Experimental Biology, 218(1), 59-70. /10.1242/jeb.107110

[154]Shi, D., Xia, X., Cui, A. (2020). The precursor of PI(3,4,5)P3 alleviates aging by activating daf-18(Pten) and independent of daf-16. Nat Commun 11, 4496. /10.1038/s41467-020-18280-4

[155]Kapsiani, S., Howlin, B.J. (2021). Random forest classification for predicting lifespan-extending chemical compounds. Sci Rep 11, 13812. /10.1038/s41598-021-93070-6

[156]Peters, M., Joehanes, R., Pilling, L. (2015). The transcriptional landscape of age in human peripheral blood. Nat Commun 6, 8570. /10.1038/ncomms9570

[157]Atchison, L. , Abutaleb, N. O. , Snyder-Mounts, E. , Gete, Y. , & Truskey, G. A. . (2020). Ipsc-derived endothelial cells affect vascular function in a tissue-engineered blood vessel model of hutchinson-gilford progeria syndrome. Stem Cell Reports, 14(2). /10.1016/j.stemcr.2020.01.005

[158]The Tabula Muris Consortium. (2020). A single-cell transcriptomic atlas characterizes ageing tissues in the mouse. Nature 583, 590–595. /10.1038/s41586-020-2496-1

[159]Lodato, M. A. , Rodin, R. E. , Bohrson, C. L. , Coulter, M. E. , Barton, A. R. , & Kwon, M. , et al. (2017). Aging and neurodegeneration are associated with increased mutations in single human neurons. Science, 359: 555-559. /10.1101/221960

[160]Gu K., Xu Y., Li H., Guo Z., Zhu S., Zhu S., Shi P., James T.D., Tian H., Zhu W.H..(2016). Real-time tracking and in vivo visualization of β-galactosidase activity in colorectal tumor with a ratiometric near-infrared fluorescent probe. J Am Chem Soc,138: 5334-5340. /10.1021/jacs.6b01705

[161]Rao, A., Barkley, D., França, G.S. (2021). Exploring tissue architecture using spatial transcriptomics. Nature 596, 211–220. /10.1038/s41586-021-03634-9

[162]Kang W., Jin T., Zhang T., Ma S., Yan H., Liu Z., Ji Z., Cai Y., Wang S., Song M.. (2021) OUP accepted manuscript. Nucl Acids Res, 50: D1085-D1090. /10.1093/pubmed/fdw123